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　　Wyss研究小组报告了一些人造Cas9激活子严格对比的情况，并列出了在来自人类、小鼠和果蝇等生物的各种细胞类 型中最常用的人造Cas9激活子。研究结果为科研人员提供了一个有价值的指南，使得他们能够简化研究努力。

CRISPR-Cas9系统使得研究人员能够编辑许多生物体和细胞类型的DNA序列。然而，科学家们也日益认识到可以利用它来激活基因的表达。为此，他们构建出了大量可激活Cas9蛋白的合成基因来研究基因功能或在潜在的治疗方法中弥补不充足的基因表达。

哈佛大学Wyss生物启发工程研究所核心教员、系统生物学平台负责人、哈佛医学院遗传学教授George Church博士说：“利用CRISPR-Cas9系统的各种工程变体来选择性激活基因，这种可能性令许多研究人员询问，到底哪种可获得的合成Cas9激 活蛋白可以用来实现他们的目的。独特地设计出所有的合成Cas9激活蛋白，并在不同的环境中测试它们是一个重要的挑战；尚未有人并排比较过它们的相对潜 力。我们希望能够为生物医学研究界提供这样的对照表。”

Wyss研究小组报告了严格对比的情况，并列出了在来自人类、小鼠和果蝇等生物的各种细胞类型中最常用的人造Cas9激活子。研究结果为科研人员提供了一个有价值的指南，使得他们能够简化研究努力。

改造Cas9蛋白破坏其DNA编辑能力，随后再将这些可激活基因的Cas9蛋白与已知具有基因激活潜力的一些蛋白质的可变结构域融合到一起。在某些 情况下，还可以改造CRISPR-Cas9系统的第二元件——将这一复合物靶向特异性DNA序列的向导RNA（gRNA），来结合一些基因激活因子。

研究的共同第一作者、Wyss研究所的研究人员Marcelle Tuttle说：“我们首先调查了7个高级Cas9激活子，将它们与原始Cas9激活子及相互之间进行了比较，原始Cas9激活子被用来提供 CRISPR-Cas9基因激活潜力的概念证明。有3个激活子提供了比其他的候选激活子更高的基因激活，并维持了对靶基因的高度特异性。”

该研究小组进而证明，排名前三的候选激活子类似地驱动了人类、小鼠和果蝇细胞中最高水平的基因表达，不论它们的组织和发育起源如何。研究人员还找到了一些方法利用这三个主要的候选激活子来进一步将基因激活扩至最大的限度。

该研究的共同第一作者、博士后研究人员Alejandro Chavez说：“在某些情况下，最大可能地激活靶基因是获得一种细胞或治疗效应的必要条件。当我们利用三种不同的gRNAs，借助三个拷贝的表现最出色 的激活子来靶向特异的基因时，我们设法协同提高了它们的表达。”

“CRISPR-Cas9的易用性为开发出一些基因组疗法提供了巨大的可能性。这项研究提供了有价值的新设计标准，将有助于合成生物学家和生物工程师在未来设计出更有效的靶向基因组工程技术，”Wyss研究所创始主任Donald Ingber博士说。

George Church是遗传学界的大牛，被誉为是个人基因组学和合成生物学的先锋。此外，如今的多重化分子技术和条码式标签也是他发明 的，Church还是纳米孔测序技术的发明者之一。

2014年9月， Church领导哈佛医学院的团队开发了一种单分子互作测序（SMI-seq）技术。该技术能够实现单分子水平上的并行分析，获得大量蛋白质的互作图谱。

2014年11月，Church领导哈佛医学院的团队在人iPS细胞中进行了CRISPR基因编辑。他们将全基因组测序和靶向深度测序结合起来，评 估了Cas9编辑iPS细胞时的脱靶效应，还鉴定了一个影响Cas9特异性的单核苷酸变异（SNV）。

2015年9月，Church和麻省理工的Ron Weiss领导研究团队开发了双重功能的CRISPR-Cas9系统，能够同时实现基因组工程和基因调控。

Church和同事们描述在猪细胞中应用CRISPR编辑方法破坏了猪基因组 62个位点的潜在有害DNA序列。这是有可能是迄今为止通过CRISPR实现精确、广泛遗传改变最极端的例子。它也为人们带了希望：这一技术最终可让猪器 官适合于人体。